几乎所有液相色谱仪接头故障都是可以避免的,按下列要求可以有效地预防接头的故障。
1、使用液相色谱仪仪器设计时的部件。
不同厂家连接管伸出刃环的长度不完全相同,混用容易导致漏液、螺纹损坏、色谱柱进出口及检测器进液口螺母破坏等,连接管在螺母中没有良好密封也会导致漏液、死体积增加等。建议可以不要互换使用不同厂家生产的接头和刃环。
2、按要求组装和拧紧接头,不可拧得过紧。
低压接头的故障主要有接头松动、管头损坏、螺纹“滑丝”、拧过头。低压接头用手上紧,加上锁紧螺丝可减少以上故障的发生,一旦发现低压接头损坏,应重新换新的。高压接头的故障与低压接头差不多,污染和装置不当也常有发生,
3、使用合适的工具。
在拧紧接头的时候一定要仔细,过紧可能会损坏螺纹、刃环等,引起漏液,最糟糕的是会使接头断在螺母内部。使用手拧紧接头,不需要任何工具就可以密封。旋紧接头时可以要用死扳手,不用活扳手,保证不损坏接头。
4、接头的清洁。
组装与拆卸接头时要检查在密封面上有无微粒和无机盐晶体。这些污染物影响密封性能,更严重的会使螺丝咬死。
液相色谱仪的日常维护与注意事项
一、日常维护:
1.定期清洗单向阀:将单向阀卸下,一般先用纯净水超声10分钟,然后用异丙醇超声,10分钟;也可直接用异丙醇超声10分钟。
2.定期清洗吸滤头:将吸滤头卸下,一般先用纯净水超声10分钟,然后用异丙醇超声10分钟;也可直接用异丙醇超声10分钟。
3.定期冲洗检测池:把色谱柱卸下,在流速1.0ml/min的状态下先用纯净水冲洗30分钟,然后再用30%
磷酸(色谱级)冲洗30分钟左右,再用超纯水冲洗至流出液为中性,最后用甲醇冲洗,待用。
二、注意事项:
1.开始进样前30分钟开氘灯即可,节约灯的能量和使用时间。
2.流动相的使用和注意事项:
①所用流动相必须预先滤过和脱气,流动相一般贮存于玻璃不锈钢容器内。贮存容器一定要盖严,防止溶剂挥发引起组成变化。磷酸盐、乙酸盐缓冲液很易长霉,应尽量新鲜配制使用,不要长期贮存。容器应定期清洗,特别是盛水、缓冲液和混合溶液的瓶子,以除去底部的杂质沉淀和可能生长的微生物。
②配制流动相用水需为娃哈哈牌纯净水或经超声过滤后的纯化水,流动相配制好后先用直径为5cm,孔径为0.45um的滤膜,通过沙芯过滤器的过滤,然后在超声仪上超声。
③不得将装流动相的容器直接放置与超声仪内,需放与筛网上进行超声。
3.六通阀的使用和维护注意事项:
①样品溶液进样前必须用滤膜过滤,以减少微粒对进样阀的磨损。
②转动阀芯时不能太慢,更不能停留在中间位置,否则流动相受阻,使泵内压力剧增,甚至超过泵的最大压力;再转到进样位时,过高的压力将使柱头损坏。
③为防止缓冲盐和样品残留在进样阀中,每次分析结束后应冲洗进样阀。通常可用水冲洗,或先用能溶解样品的溶剂冲洗,再用水冲洗。
4.色谱柱柱压升高的主要因素:
①LC-10AT/20AT/10ATPlus泵的单向阀堵塞。
②色谱柱的入口筛板堵塞。
③吸滤头堵塞。
④PEEK管接口处堵塞。
5.色谱柱柱压不稳的因素:
①泵内有空气。
②泵密封垫损坏。
③溶剂中的气泡。
④系统检漏,找出漏点。
6.样品峰保留时间漂移的主要因素:
①室内温度变化过大。
②流动相成分发生变化。
③色谱柱未平衡好。
④泵中有气泡。
⑤该流动相是否适宜此样品的检测。
7.基线漂移的主要因素:
①柱温波动。
②流动相不均匀。
③流通池被污染或有气体。
④检测器出口阻塞。
⑤流动相配比不当或流速变化。
⑥流动相污染、变质。
⑦使用循环溶剂。
8.检测器灵敏度不够的主要因素:
①样品进样量不足。
②波长设置不正确。
③检测器池窗污染。
④检测池中有气泡。
⑤电压不稳。
⑥流动相流速不合适。
9.色谱柱的使用和维护注意事项:
①避免压力和温度的急剧变化及任何机械震动。柱压的突然升高或降低也会冲动柱内填料,因此在调节流速时应该缓慢进行,在阀进样时阀的转动不能过缓。
②应逐渐改变溶剂的组成,特别是反相色谱中,不应直接从有机溶剂改变为全部是水,反之亦然。
③一般说来色谱柱不能反冲,只有生产者指明该柱可以反冲时,才可以反冲除去留在柱头的杂质。否则反冲会迅速降低柱效。
④选择使用适宜的流动相(尤其是pH),以避免固定相被破坏。
⑤避免将复杂的样品尤其是生物样品直接注入柱内,需要对样品进行预处理或者在进样器和色谱柱之间连接一保护柱。
⑥经常用强溶剂冲洗色谱柱,清除保留在柱内的杂质。
⑦保存色谱柱时应将柱内充满乙腈或甲醇,柱接头要拧紧,防止溶剂挥发干燥。绝对禁止将缓冲溶液留在柱内静置至次日或更长时间。
⑧色谱柱使用过程中,如果压力升高,一种可能是滤片被堵塞,这时应更换滤片或将其取出进行清洗;另一种可能是大分子进入柱内,使柱头被污染;如果柱效降低或色谱峰变形,则可能柱头出现塌陷,死体积增大。
⑨以硅胶为基质的填料,只能在pH2~9范围内使用。每次分析检测完成后,可以用洗脱能力强的洗脱液冲洗,例如ODS柱宜用甲醇冲洗至基线平衡。
10.样品必须用直径为2.5cm,孔径为0.45um的滤膜针式过滤。如有明确要求需用离心过滤的,经离心过滤后取上清液即可。
在液相色谱仪分析中,根据流动相和固定相相对极性的不同,可分为正相色谱和反相色谱。所谓正相色谱是指固定相极性大于流动相极性的情况,反之,固定相的极性小于流动相的极性,则称为反相色谱。
正相分析的场合:
假设使用的溶剂是15%二氯甲烷/己烷混合溶液,样品在二氯甲烷中更易溶解。如果样品可以在流动相中完全溶解自然没有问题。
如果样品不能溶解在溶剂中,选择100%二氯甲烷作为溶剂的情况下可能会产生故障。
在一般情况下,经常使用混合溶剂作为流动相。哪种组合最易于样品溶解可以从样品的洗脱时间上看出。在选择溶解样品的溶剂之前,把流动相的组成在5~10%变化范围内各种样品的洗脱时间作比较,选择样品最容易溶解的溶剂。因为,样品和溶剂、流动相互相溶解是分析的前提条件。
反相分析的场合:
假设使用的溶剂是50%的乙腈,使用的样品在乙腈中比在水中更易溶解。当然,可以的方法是使样品完全溶解于流动相中。
然而,如果样品不能溶解在流动相中,如何选择溶剂呢?100%的乙腈溶液?或者浓度50%以下的乙腈水溶液?这种情况下,第一个选择就是浓度50%以下的乙腈水溶液。第二个选择就是100%的水溶液,可以100~500微升注入。最差的选择是100%乙腈溶液。因为即使样品完全溶解在了100%的乙腈溶液中,随着流动相的加入,可能乙腈溶液被稀释导致样品析出。轻则造成上述a,b两种故障,重则向c,d发展。最严重则发生f的故障,那就只能更换色谱柱了。
然而,混合样品的情况下可能发生g的故障。判断样品会不会在色谱柱内部析出可以通过以下步骤。减少样品较易溶解的,溶剂量,然后试着增加注入量。也就是说,如果是要求注入在100%乙腈溶液中溶解的样品20ul,可以试着注入在20%乙腈中溶解的样品125ul。如果上述的故障消失了,则说明使用100%乙腈作为溶剂是不合适的,样品会在色谱柱内析出。