1.转速
离心机根据最大转速的不同分为低速离心机(<10000rpm 1="" 30000="" 0000="">30000 rpm/min)，每个离心机都有额定的最大转速，最大转速指的是在空载情况下的转速，但最大转速根据转子种类的不同、样品质量的大小而有差别。
例如：一个离心机的额定转速是16000 rpm/min，说明在空载的时候转子每分钟旋转16000次，加上样品以后，转速肯定会小于16000 rpm/min。转子的不同，最大转速也不同(一台进口离心机可选配多个转子，其代表国产离心机的卢湘仪离心机厂家成功研制出这类技术，一般分离效果主要取决的不是转速，而是离心力，所以有时候转速没达到要求，只要离心力能达标也是一样的，实验时能达到你所需要的效果。离心力计算公式：RCF=11.2×R×(r/min/1000)2 R代表离心半径 ， r/min 代表转速。
2.温度
有些样品(如蛋白质，细胞等)在高温环境下会破坏，这就要选择冷冻离心机，冷冻离心机都有额定的温度范围。实验室离心机在高速运转的时候所产生热量和离心机的制冷系统平衡在一定温度(一般冷冻离心的样品需要保持在3℃～8℃)，具体能达到多少也和转子有关，如一个离心机的额定温度范围为-20℃～40℃，装上水平转子在旋转的时候可以达到3℃左右，如果是角转子可能达到7℃左右，具体情况还是看设定的温度与转速以及转子决定。
3.容量
每次需要离心多少个样品管，每个样品管需要多少容量，这些因素决定一个离心机的总容量，简单的来说离心机的总容量=每个离心管的容量×离心管个数，总容量和工作量的大小是相匹配的。
4.转子
实验室离心机的转子主要分为两种，水平转子：运转时吊蓝处于水平状态，与转轴成直角，样品将沉淀集中于离心管的底部：角转子：离心容器与转轴成一固定角度，样品将沉淀集中于离心管底部及靠近底部的侧壁。如果希望分离的样品集中于离心管的底部就选择水平转子，如果希望样品集中于离心管的底部和靠近底部的侧壁上就要选择角转子。
还有一些特殊试验或特殊样本需要特殊的转子如：大容量吊篮(多用于血站)、酶标板转子、载玻片转子、PCR转子、试管架转子和毛细管转子等。转子都有固定的规格，它是和离心机的容量结合起来的，如36×5 ml的角转子，既决定了转子的类型也决定了离心机的容量，另外转子材质还分为工程塑料，不锈钢，铝合金，钛合金等材料，选材的不同直接决定了转子的价格，转速及使用寿命，所以转子的选择非常重要。
5.控制系统
高档的实验室离心机都采用了微电脑控制系统，这些控制系统不但能确保离心机安全的运行还能自动完成工作任务。现在很多离心机都有较好的人性化的控制系统.比如：转子识别功能，安全锁功能，自动平衡功能，故障提示功能，加速和减速曲线等等。除以上几点之外还要注意一些细节和必要的配件。离心机的主要部件是电机，电机分为带碳刷电机和无碳刷电机，前者已经淘汰，现在的离心机大多都是无碳刷电机，有的电机还带有刹车功能。冷冻离心机在制冷方面也有区别，现在环保的技术当然是无氟制冷。
除此之外还要考虑噪音问题，尽量选择噪音较小的离心机，这样能保持舒适的实验环境。实验室离心机在配件方面也要谨慎，有些实验室用离心机要用特殊的离心管(离心有毒样品或者需要超高速离心的样品)，这样的离心管就必须配有相应的管套，才能更安全。还有一些特殊的样品容器(不规则样品瓶、血袋等)，这些细节和配件都要在选择离心机的时候考虑周详，否则就不能进行正常的工作。
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实验室离心机一般小故障的解决方法：
实验室离心机的常见故障的排除
1、通电后，电机不转：
首先对电源线、插头、插座进行检查，如有损坏则应更换，如无问题则检查波段开关或变阻器是否损坏或连线开脱。
如损坏或开脱则更换损坏元件，重焊连线。
如无问题则检查电机磁场线圈是否有断脱或断路（内部）如是连线圈断脱可以重焊．如是线圈内部断路则只能重绕线圈。
2、电动机转速达不到额定转速：
首先检查轴承，如轴承损坏则更换轴承。如轴承内部缺油或污物太多则应清洗轴承并加注润滑脂。
检查整流子表面是否有异常或电刷与整流子轰面的配合是否吻合，如整流子表面有异常，如有一层氧化物则应用细砂纸对其进行打磨。
如整流子与电刷的配合不吻合则应调整到接触良好的状态如无以上间题则检查转子线圈中，是否有短路的现象，如有则应重绕线圈。
3、震动剧烈、噪音大：
检查是否有不平衡的问题存在。固定机器的螺帽松动。
如有则固紧，检查轴承是否损坏或弯曲；如有则更换轴承；机器外罩变形或位置不正确发生摩擦；如有则对其进行调整。
4、天冷时低速档不能启动：
润滑油凝固或润滑油变质干涸粘住；开始时，可用手帮助重新转动或清洗后主动重新上油。
【导读】 实验室离心机分离方法不一，适用场合也不尽相同。目前主流的离心分离方法主要是差速离心法和区带离心法，其实在实验室离心技术制备超离心法一文中有提及两种离心方法，今天笔者对这两种方法的原理及应用介绍进
实验室离心机分离方法不一，适用场合也不尽相同。目前主流的离心分离方法主要是差速离心法和区带离心法，其实在实验室离心技术制备超离心法一文中有提及两种离心方法，今天笔者对这两种方法的原理及应用介绍进行补充和完善。
1. 差速离心法：许多具有生物活性的生物大分子和亚细胞器是不稳定的，需要低温高速离心，常用的是差速离心法。通过离心后倒出上清液和沉淀分开，把分离出来的上清液再增大转速离心，分离出第二部分沉淀，这样不断增大转速，逐级分离出所需要的物质。利用这种方法可以有效地分离大小上差别较大的颗粒，但不能分离大小相似的颗粒，而且所分离出来的组分往往是不均一的，杂有其他种类的颗粒。
2.区带离心法：其中又可以分为两种：速率区带离心和等密度速率区带离心。
1) 速率区带离心法：这是将小量悬液放在一平缓的密度梯度液上，用此梯度液来稳定颗粒的沉降。由于离心，颗粒离开起始区带而移动，移动的速度是由颗粒的大小、形状和它们所受实验室离心机的离心力来决定的。离心一段时间历，各种颖粒将按照它们的相对速度移动而各个分开，成为一系列区带。用这种方法我们可以将沉降速度差为20%或者更大的颗粒。
2)等密度区带离心法：这是将要分离的颗粒悬液放至密度梯度液上，或者实际上将颗粒溶于制作梯度的溶液中。通过离心，颗粒或者上浮或者下沉，达到与它们自己密度相同的液体处在这里它们没有重量，不管离心多长时间，它们再也不移动了。这些颗粒可成为一系列区带，每种颗粒在它自己的密度区。所以，这是一种利用颗粒浮密度的大小分离颗粒大小的方法。使用的介质通常是氯化铯(Cscl)和硫酸铯(Cs2SO4)。前者适合于DNA分离，后者适合于RNA分离。这种方法与速率区带离心法相比，它有一个主要的缺点是在离心期间，颗粒不可避免地暴露在高浓度的梯度溶液中，会引起颗粒的部分损伤，并可能出现相当于损伤颗粒的一些额外的区带。
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