1、旧
色谱柱柱效低,分离不好,柱入口床层塌陷
原因:填料被
流动相溶蚀而流失。
解决方法:用同型填料填补柱效可部分恢复。对硅胶质填料,流动相PH值在2—7范围内,否则可能被溶蚀。
2、柱使用—段时间后,柱效下降,出现峰拖尾
原因:柱入口床层被污染。
解决方法:用强溶剂冲洗20-30ml,若效果不明显应废弃。
3、旧色谱柱柱效低分离不好,有时出现双峰
原因:入门填料被污染变质所致。
4、新柱柱效低柱外死体积大
原因:样品在流动相中
溶解不好,影响传质过程。更换连接管,重新连接色谱柱,降低死体积。
解决方法:使用合适的流动相或使用流动相溶解样品。
5、新柱接到仪器上后,柱头漏液
原因:柱接头与仪器之间连接管的压环变形量不够。
解决方法:用扳手顺时针方向拧紧1/4圈直到不漏液为止。
6、柱压升高
原因:色谱柱入U滤片被流动相或样品中颗粒堵住。
样品组分在滤片上沉淀堵住滤片。
解决方法:卸下入口接头的滤片,使用1:1的硝酸溶液超声清洗5min,再用水、甲醇清洗除去水份。样品及流动相使用0.45μm滤膜除去微量杂质。使用流动相作溶剂配制样品。
7、新柱接到仪器上后,检测器出口不断有小气泡出现
原因:①同上。
②流动相脱气不彻底特别是MeOH/H20体系由于氢键作用很容易出现气泡。
解决方法:①同上。
②配好流动相后一定要进行脱气处理。
8、新柱接到仪器上后,启动仪器没有柱压降
原因:柱放置时间过长柱内充装的液体己挥发干。
解决方法:继续开
泵,用流动相将柱内气体置换掉。
9、新柱接到仪器上后柱压降不断增加,甚至超过仪器的耐压限
原因:柱入口滤片被固体颗粒堵塞或被毒菌堵塞。
解决方法:更换或清洗柱入口滤片;用0.45μm过滤膜过滤流动相除去微小颗粒物。
10、使用—段时间后,柱效下降,分离不好
原因:①柱填料被流动相溶解而流失。
②柱填料被样品杂质污染。
解决方法:①推荐使用予柱。如柱床层塌陷,用相同型号填料填补。
②推荐使用保护柱或用强溶剂冲洗色谱柱除去污染杂质。
11、柱使用一段时间后,柱效下降出现双峰
原因:柱入口床层被污染使柱填料变质。
解决方法:用强溶剂冲洗除去杂质。
12、进样次数增加柱压降逐渐增加
原因:①样品中含有不溶于流动相的微小颗粒物。
②样品在流动相中析出微小结晶。
解决方法:①用0.45μm过滤膜过滤样品。
②推荐使用流动相溶解样品。
13、使用缓冲液作流动相时,柱压降升高很快
原因:霉菌生长所致。
解决方法:①在流动相中加入有毒物质或加叠氯化钠防止霉菌生长。
②实验结束后先用纯水后用MeOH各冲洗20-30ml后关机。
系统一般由输液泵、进样器、色谱柱、检测器、数据记录及处理装置等组成。 其中输液泵、色谱柱、检测器是关键部位。有的仪器还有梯度洗脱装置、在线脱气机、自动进样器、与柱或保护住、柱温控制器等,现代HPLC仪还有微机控制系统,进行自动化仪器控制和数据处理。 下面就介绍下高效液相色谱使用中的几个重要环节吧。 实验前的准备工作 1.过滤流动相。为了保证流动相洁净,流动相使用前都必须微膜过滤。 2.流动相脱气。为了避免流动相中气泡对仪器(气泡可能会对仪器及相关设备的正常使用及寿命产生一定影响)及分析结果的影响。 3.运行液相泵前尽量先清洗泵柱塞部件。清洗液一般采用10%甲醇溶液,也有采用10%异丙醇溶液 (5%甲醇或异丙醇等有机相溶液能避免微生物污染,但浓度不能太高,高于20%缓冲液可能会导致盐结晶析出,碰到酸碱类物质可能会有比较强烈的反应;另外异丙醇粘度较大,清洗能力较强;也有采用纯水清洗的,这样如果仪器每天使用还行,如果长期不用,为了防止微生物繁殖,纯水还得用含有有机相的清洗液置换出去) 冲洗,这是为了保护泵柱塞和密封圈等部件在泵运行时不被结晶盐等磨损而导致泵头漏液。 4.每天运行仪器前先排气。一般的液相色谱仪都有排气功能,没有的可以不接色谱柱开机运行几分钟排气。 5.泵运行时尽量不采用大流量模式(主要是换流动相或排气泡等,流量尽量设为3.0ml/min以内,这样更有利于保护泵柱塞杆和密封圈等部件的寿命)。 6.分析前先对色谱系统(整个流路)进行冲洗及平衡,尤其是色谱柱。先用纯甲醇冲洗30分钟,再换10%甲醇水溶液冲洗30分钟,最后换含缓冲盐或酸碱类物质的流动相平衡30分钟。色谱柱如果长期没用,每一步冲洗、平衡量尽量为色谱柱柱容量20倍以上)。 如果流动相中不含缓冲盐或酸碱类物质,纯甲醇冲洗完可直接换为流动相。使用色谱柱前知道或怀疑色谱柱中残留有或酸碱盐类物质,在用纯甲醇冲洗前增加一步10%甲醇水溶液冲洗。 7.如果色谱柱需要控温(升温),要先运行泵后再设柱温箱温度。 8.待仪器运行稳定后(基线基本走平后,这个是经验值),方可进样。 样品前处理 1.样品浓度不要太大,杂质不要太多,否则色谱柱处理起来压力很大。 2.进样前样品一定得先经微膜(一般采用0.22um或0.45um微膜)过滤。 实验过程中注意事项 1.为了避免进样器残留影响,进样前先对进样器进行清洗(这个不是必须的,但尽量是每进一针样品或标准品前都清洗进样器和进样针,当然同一样品也可以不洗,不同样品尽量洗),清洗顺序为纯水、甲醇、流动相。 2.每进一针样品后要对系统进行一次冲洗、平衡后再进下一针样品(等度要求不高,梯度要求相对高,主要是冲洗色谱柱中残留的强保留物质)。 实验完毕的后续工作 1.做完样要先清洗进样器,清洗顺序为纯水、甲醇。 2.关闭柱温箱温度设置。 3.冲洗色谱系统及色谱柱。先用10%甲醇水溶液冲洗30分钟后换为纯甲醇冲洗30分钟,待基线基本走平停泵。如果流动相中不含缓冲盐或酸碱类物质,冲洗时流动相可直接换为纯甲醇。色谱柱用完后如果长时间内不会再用,纯甲醇冲洗量要大于色谱柱柱容量20倍以上的,冲洗后卸下,两端密封保存。 4.待色谱柱温度降至接近于室温时再停泵、关机(这一点需特别注意,目的是防止温度过高损坏色谱柱)。 5.关机前用清洗液清洗柱塞杆。有关高效液相色谱仪的使用