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立体显微镜中的灯泡更换步骤 显微镜常见问题解决方法
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立体显微镜中的灯泡更换步骤 显微镜常见问题解决方法
时间:2020-07-11 来源:仪多多仪器网 作者:仪多多商城
立体显微镜因其所具备的众多优点在工农业和科研各部门有着广泛的应用。
若在使用过程中出现一些问题可根据实际情况自行解决。
根据实际使用情况常见的故障有:视场较模糊或有脏物,可能的原因有标本上有脏物,目镜表面有脏物,物镜表面有脏物,工作板表面有脏物。可根据实际情况采取清洁标本,目镜,物镜和工作板表面的脏物解决。双像不重合可能的原因为瞳距调节不正确可采取修正瞳距的措施,双像不重合也可能是视度调节不正确可采取重新进行视度调节,还有可能是左右目镜倍率不同可检查目镜并重新安装相同倍率的目镜。如果是图像不清晰可能是物镜表面有脏物请清洁物镜。如果变焦时图像不清晰有可能是视度调整不正确和调焦不正确,可重新进行视度调节和调焦。若发生灯泡经常烧掉和灯光闪烁不定的情况时,则也许是当地的线电压太高,灯泡快烧坏了和电线连接不良,请仔细检查电压和显微镜的电线连接情况是否牢固,如不是则可能是灯泡快烧坏了可重新更换灯泡解决。
立体显微镜在使用前的调校主要有:调焦,视度调节,瞳距调节和灯泡更换几个步骤。
下面分别进行说明。调焦:将工作台板放入底座上的台板安装孔内。观察透明标本时,选用毛玻璃台板;观察不透明标本时,选用黑白台板。然后松开调焦滑座上的紧固螺钉,调节镜体的高度,使其与所选用的物镜放大倍数大体一致的工作距离。调好后,须锁紧紧固螺钉。调焦时,建议选用平面物体,如印有字符的平整纸张、直尺、三角板等。视度调节:先将左右目镜筒上的视度圈均调至0刻线位置。通常情况下,先从右目镜筒中观察。将变倍手轮转至最低倍位置,转动调焦手轮和视度调节圈对标本进行调节,直至标本的图像清晰后,再把变倍手轮转至高倍位置继续进行调节直到标本的图像清晰为止,此时,用左目镜筒观察,如不清晰则沿轴向调节左目镜筒上的视度圈,直到标本的图像清晰为止。瞳距调节:扳动两目镜筒,可以改变两目镜筒的出瞳距离。当使用者观察视场中的两个圆形视场完全重合时,说明瞳距已调节好。应该注意的是由于个体的视力及眼睛的调节差异,因此,不同的使用者或即便是同一使用者在不同时间使用同一台显微镜时,应分别进行齐焦调整,以便获得较佳的观察效果。无论是更换上光源灯泡,还是更换下光源灯泡,在更换前,请务必将电源开关关上,电源线插头一定要从电源插座上拔下。当更换上光源灯泡时,先拧出上光源灯箱的滚花螺钉,取下灯箱,然后从灯座上卸下坏灯泡,换上好灯泡,再把灯箱和滚花螺钉装上即可。当更换下光源灯泡时,需将毛玻璃台板或黑白台板,从底座上取出,然后从灯座上取下坏灯泡,换上好灯泡;再把毛玻璃台板或黑白台板装好即可。更换灯泡时,请用干净的软布或棉纱将灯泡玻壳擦拭干净,以保证照明效果。
荧光显微镜 型号:MHY-28314
一、用 途
MHY-28314系列荧光显微镜采用荧光显微技术,配置了激发光,在显微镜上观察标本的荧光现象具有极高的敏感度,可以清楚地观察和鉴定用普通显微技术难以观察到的染色体标本,作为一种研究方法或实验手段。生物荧光显微镜广泛应用于生物和医学等技术领域中。生物荧光显微镜适用荧光显微术和明视场观察,是生物学、细胞学、肿瘤学、遗传学、免疫学等研究工作的理想仪器
二、技术参数
大视野目镜 10X 视场Φ20 mm
平场消色差物镜 4X 数值孔径(NA)0.10 工作距离17.9mm
10X 数值孔径(NA)0.25 工作距离8.1mm
40X 数值孔径(NA)0.60 工作距离3.3mm
100X (弹簧,油) 数值孔径(NA)1.25 工作距离0.35mm
荧光物镜 25X 数值孔径(NA)0.65 工作距离0.62mm
40X 数值孔径(NA)1.0 工作距离3.3mm
目镜筒 三目镜,倾斜30?
瞳距调节范围 53-75mm
总放大倍数 40X-1000X 系统放大倍数:100X-2800X
调焦机构 粗微动同轴调焦, 微动格值:2μm,粗动松紧可调,带锁紧和限位装置
落射照明器 带视场光栏、孔径光栏、起偏振片,(黄,蓝,绿)滤色片和磨砂玻璃
转换器 四孔(内向式滚珠内定位) /五孔(内向式滚珠内定位)
载物台 双层机械移动式 (尺寸:160mmX140mm,移动范围: 75mmX50mm)
集光器 卤素灯适用
落色应该照明器 B(蓝光),G(绿光)激发光滤色系统和O(普通光)透射光系统
B(蓝色激发)干涉虑色镜,波长420-490(纳米)
G(绿色激发)干涉虑色镜,波长460-550(纳米)
紫外光(UV):激发光波段330~400nm
落射荧光装置 电源箱110V/220V 100W直流汞灯
激光共聚焦显微镜是在荧光显微镜成像基础上加装了激光扫描装置,利用计算机进行图像处理,把光学成像的分辨率提高了30%--40%,使用紫外或可见光激发荧光探针,从而得到细胞或组织内部微细结构的荧光图像,在亚细胞水平上观察诸如Ca2+ 、PH值,膜电位等生理信号及细胞形态的变化,成为形态学,分子生物学,神经科学,药理学,遗传学等领域中新一代强有力的研究工具。激光共聚焦成像系统能够用于观察各种染色、非染色和荧光标记的组织和细胞等,观察研究组织切片,细胞活体的生长发育特征,研究测定细胞内物质运输和能量转换。能够进行活体细胞中离子和PH值变化研究(RATIO),神经递质研究,微分干涉及荧光的断层扫描,多重荧光的断层扫描及重叠,荧光光谱分析荧光各项指标定量分析荧光样品的时间延迟扫描及动态构件组织与细胞的三维动态结构构件,荧光共振能量的转移的分析,荧光原位杂交研究(FISH),细胞骨架研究,基因定位研究,原位实时PCR产物分析,荧光漂白恢复研究(FRAP),胞间通讯研究,蛋白质间研究,膜电位与膜流动性等研究,完成图像分析和三维重建等分析。
基本原理
传统的光学显微镜使用的是场光源,标本上每一点的图像都会受到邻近点的衍射或散射光的干扰;激光共聚焦显微镜利用激光束经照明针孔形成点光源对标本内焦平面的每一点扫描,标本上的被照射点,在探测针孔处成像,由探测针孔后的光点倍增管(PMT)或冷电耦器件(cCCD)逐点或逐线接收,迅速在计算机监视器屏幕上形成荧光图像。照明针孔与探测针孔相对于物镜焦平面是共轭的,焦平面上的点同时聚焦于照明针孔和发射针孔,焦平面以外的点不会在探测针孔处成像,这样得到的共聚焦图像是标本的光学横断面,克服了普通显微镜图像模糊的缺点。
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